抗體純化是生物醫(yī)藥領(lǐng)域的一項(xiàng)關(guān)鍵技術(shù)，它涉及到從復(fù)雜的混合物中提取出高純度的抗體。純化后的抗體具有更高的特異性和靈敏度，能夠提高實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性和重復(fù)性。以下是幾種常用的抗體純化方法及其步驟：
一、初步純化：
l 鹽析法（飽和硫酸銨沉淀法）：
l 向抗血清中加入飽和硫酸銨溶液，通過改變抗體的溶解度來沉淀非特異性蛋白和血清蛋白。
l 通過離心去除沉淀，然后用緩沖液透析以去除多余的鹽分。
l 正辛酸-飽和硫酸銨沉淀法：
l 先用正辛酸處理，使雜蛋白沉淀，而IgG類抗體存在于上清液中。
l 再次通過飽和硫酸銨沉淀法進(jìn)一步提純。
二、中級(jí)純化：
1、親和純化：
l 使用Protein A、Protein G或Protein L親和層析柱。
l Protein A對(duì)人IgG（除了IgG3）有特異性，Protein G對(duì)多種物種的抗體有特異性，Protein L對(duì)κ輕鏈有特異性。
l 抗體在特定pH條件下與親和柱結(jié)合，通過洗脫液（如甘氨酸）洗脫，同時(shí)用中和液（如Tris緩沖液）中和。
l 透析去除緩沖液，達(dá)到所需的抗體濃度和純度。
三、高級(jí)純化：
1、抗原親和純化：
l 將抗原偶聯(lián)到瓊脂糖凝膠柱上，構(gòu)建親和柱。
l 樣品通過親和柱時(shí)，特異性抗體與抗原結(jié)合，而非特異性抗體和雜蛋白流穿。
l 使用適當(dāng)?shù)南疵摼彌_液（如低pH或競(jìng)爭(zhēng)性配體）洗脫特異性抗體。
l 透析和緩沖液交換以去除洗脫緩沖液，達(dá)到最終純度。
四、關(guān)鍵優(yōu)化策略：聚集體去除技術(shù)
1、抗體聚集體可能增加免疫原性風(fēng)險(xiǎn)，傳統(tǒng)Protein A親和層析難以有效分離。最新研究表明，在洗脫緩沖液中添加聚乙二醇（PEG）與氯化鈣/氯化鈉組合可顯著提升分離效果：
2、作用機(jī)制：PEG優(yōu)化洗脫峰形，氯化鈣/氯化鈉通過調(diào)節(jié)疏水作用提高單體與聚集體的分辨率；
3、操作建議：推薦5% PEG+500mM氯化鈣或750mM氯化鈉組合，需通過小試優(yōu)化濃度以平衡分離效果與蛋白活性。
五、注意事項(xiàng)
1、避免蛋白酶污染?：全程加入蛋白酶抑制劑（如PMSF）。
2、?層析柱平衡?：每次使用前用5倍柱體積緩沖液平衡。
3、?洗脫體積控制?：Protein A/G洗脫體積需精確，避免抗體稀釋。
這些步驟確保了抗體的高純度和特異性，是抗體生產(chǎn)過程中的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。?
可可.jpg)
